使用说明:
本步骤以96孔板,每孔接种100μl细胞为例,如使用其它类型的多孔板,各试剂使用量请按照相应比例进行换算。
1.3D细胞的准备。
在96孔3D培养板中每孔接种100μl细胞,细胞的接种量根据具体的实验方案,例如培养天数、需要的3D细胞球状体的大小等确定,按照3D细胞培养方案培养细胞,并按照实验设计进行一定的处理。96孔3D培养板推荐使用碧云天的3D细胞培养板包被液(C0365)、3D细胞培养包被试剂盒(U形底96孔板) (C0366)包被的U形底96孔板,或直接使用BeyoGold™超低吸附96孔板(FULA962/FULA961)、BeyoGold™超低吸附黑色透明底96孔板(平底带盖,独立包装) (FULA965)等。
注:为达到最佳的染色效果,具体的细胞球培养时间等可以根据细胞种类、具体的实验需求等进行调整。例如,对于HCT-116细胞,通常接种培养48小时形成较为紧实的细胞球后进行染色效果较好。
2.3D细胞固定(选做)。
小心去除孔内培养液,每孔加入100μl免疫染色固定液(P0098)或4%多聚甲醛固定液(P0099),室温固定细胞10分钟。
注1:为达到最佳的使用效果,具体的固定时间可以根据细胞种类、培养天数、细胞球状体大小等进行调整。
注2:固定细胞球等过程须轻缓,避免破坏或吹散3D细胞球。
3.3D细胞DiI染色。
a.Beyo3D™ DiI染色工作液的用量:对于6、12、24、96孔板,每孔Beyo3D™ DiI染色工作液的用量分别为0.5~1ml、200~500μl、100~200μl和50~100μl。
b.Beyo3D™ DiI染色工作液的配制:如下表所示,按照96孔板每孔需要100μl Beyo3D™ DiI染色工作液的量,用染色缓冲液稀释配制适量的Beyo3D™ DiI染色工作液。
样品数 10 samples 50 samples 100 samples
Beyo3D™ DiI (200X) 5μl 25μl 50μl
染色增强剂(400X) 2.5μl 12.5μl 25μl
染色缓冲液 992.5μl 4.962ml 9.925ml
Beyo3D™ DiI染色工作液 1ml 5ml 10ml
注1:配制好的Beyo3D™ DiI染色工作液必须一次使用完毕,不能冻存。
注2:Beyo3D™ DiI染色工作液中的DiI的最终浓度可以根据不同细胞系和实验体系通过预实验进行优化。DiI的工作浓度通常为0.5-2X,推荐使用浓度为1X。DiI的最终浓度改变时,染色增强剂的用量可以不变。
c.染色:小心吸除原有细胞培养液,沿着孔壁缓慢加入100μl Beyo3D™ DiI染色工作液,在适宜于细胞培养的温度避光孵育15分钟。
注1:为达到最佳的染色效果,具体染色时间可以根据细胞种类、培养天数、细胞球状大小等进行调整。
注2:任何液体吸除或加入的过程须轻缓,避免破坏或吹散3D细胞球。3D细胞球通常位于在培养板或培养皿等培养器皿的底部,培养板在对着光线时能看到孔内针尖大小的乳白色细胞球,吸除孔内液体时须尽量避开细胞球以免将细胞球吸走。可以根据孔内液体的体积将移液器调至合适的量程,例如需要吸除的液体体积为100μl,将200微升移液器的量程调整到50-70微升,避开细胞球从液体边缘缓慢、分次吸除。孔内加入液体时,沿着孔壁小心、缓慢加入,避免破坏或吹散3D细胞球。
4.荧光检测。
a.荧光显微镜检测。孵育结束后,小心去除孔内染色液,沿着孔壁缓慢加入适量的PBS洗涤细胞球1次并更换为完全培养液,随后在荧光显微镜下观察荧光染色效果。注意整个过程均需注意避光操作。
注:任何液体吸除或加入的过程须轻缓,避免破坏或吹散3D细胞球。
b.荧光酶标仪检测。孵育结束后,小心吸除孔内染色液,沿着孔壁缓慢加入适量的PBS洗涤细胞球1次并更换为完全培养液,随后用荧光酶标仪检测(DiI为红色荧光,Ex/Em=549/565nm)。
注:任何液体吸除或加入的过程须轻缓,避免破坏或吹散3D细胞球。
参考文献:
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