Lipo6000™转染试剂

 产品编号: C0529
 产品包装: 5×1.5ml
 产品价格: 3158.00元
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产品简介

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产品编号 产品名称 产品包装 产品价格
C0529 Lipo6000™转染试剂 5×1.5ml 3158.00元

    Lipo6000™转染试剂(Lipo6000™Transfection Reagent)是一种非常高效的新型转染试剂,达到了国际最主流转染试剂的转染效果。适用于把质粒、siRNA或其它形式的核酸包括DNA、RNA、寡核苷酸、以及核酸蛋白复合物或带负电荷的蛋白转染到真核细胞中,也可以用于活体动物的核酸转染以用于基因治疗。
    Lipo6000™转染试剂对于常见的哺乳动物细胞具有非常高的转染效率、重复性好、操作简单、无明显的细胞毒性,并且对于贴壁细胞和悬浮细胞都适用。
    Lipo6000™转染试剂的使用方法和常用的Lipofectamine® 2000 Reagent完全一致。并且经过对HEK293
T、Hela、NIH3T3、HEK293FT、CHO等细胞的测试,转染效率也和Lipofectamine® 2000 Reagent相当甚至略高。
    Lipo6000™转染试剂不仅适用于质粒、siRNA等单一成分的细胞转染,也适合多个质粒或者质粒与siRNA等的组合转染。
    Lipo6000™转染试剂转染过表达质粒后,通常24-48小时后达到较高的蛋白表达水平,并且很多情况下蛋白表达量在转染后48小时显著高于转染后24小时;转染siRNA通常3-5天后对于目的基因的下调水平会比较理想。
    Lipo6000™转染试剂转染细胞时,基本不受细胞培养液中的血清和抗生素的影响,即可以在血清和抗生素存在的情况下进行细胞转染。但为了取得最佳的转染效果,推荐转染时使用不含抗生素的含血清的细胞培养液。
    Lipo6000™转染试剂的转染效果可以通过转染表达EGFP等荧光蛋白的质粒进行快速鉴定。
    Lipo6000™转染试剂与Lipofectamine® 2000 Reagent转染效果比较请参考图1-6。

图1.Lipo6000™转染试剂与Lipofectamine®
2000 Reagent转染效率的比较。仅转染试剂
不同,其余条件一致。

图2.Lipo6000™转染试剂(A-B)与Lipofectamine® 2000 Reagent(C-D)用EGFP表达质粒转染HEK293T细胞后的实拍效果图。

图3.Lipo6000™转染试剂(A-B)与Lipofectamine® 2000 Reagent(C-D)用EGFP表达质粒转染Hela细
胞后的实拍效果图。

图4.Lipo6000™转染试剂(A-B)与Lipofectamine® 2000 Reagent(C-D)用EGFP表达质粒转染NIH3T3细胞后的实拍效果图。

图5.Lipo6000™转染试剂(A-B)与Lipofectamine® 2000 Reagent(C-D)用EGFP表达质粒转染HEK293
FT细胞后的实拍效果图。

图6.Lipo6000™转染试剂(A-B)与Lipofectamine® 2000 Reagent(C-D)用EGFP表达质粒转染CHO细胞后的实拍效果图。

    对于六孔板,一个包装的本转染试剂大约可以转染1500个孔;对于24孔板,一个包装的本转染试剂大约可以转染7500个孔。
包装清单:

产品编号

产品名称

包装

C0529

Lipo6000™转染试剂

5×1.5ml

说明书

1份

保存条件:
    4℃保存。
注意事项:
    使用高纯度的DNA或RNA有助于获得较高的转染效率。对于质粒,可以使用碧云天生产的质粒大量抽提试剂盒(D0026)进行抽提,以保证可以获得较高的转染效率。
    转染前细胞必须处于良好的生长状态。
    需自备不含抗生素的无血清培养液或Opti-MEM®培养液或普通的DMEM培养液。
    Lipo6000™转染试剂不能vortex或离心,宜缓慢晃动混匀。
    Lipo6000™转染试剂使用后请立即盖好盖子,避免长时间暴露在空气中,影响转染效率。
    本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
    为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明

使用说明:
1. DNA转染:
   a. 细胞培养(以六孔板为例,其它培养板或培养皿可参考六孔板):在转染前一天(18-24小时)按照
      每孔约20-70万细胞(具体的细胞数量据细胞类型、大小和细胞生长速度等而定)接种到六孔板内
      进行培养,使第二天细胞密度能达到约70-90%。
   b. 在进行下述转染步骤前,把培养有细胞的六孔板每孔换成2ml新鲜培养液(含有血清,不含抗生
      素)。可以使用含有血清并含有抗生素的新鲜培养液,但抗生素的存在对于有些细胞容易导致转
      染后出现一定的细胞毒性。
   c. 参考下表,对于待转染的六孔板中每一个孔的细胞,取两个洁净无菌离心管,分别加入125 μl
      不含抗生素和血清的DMEM培养液(高糖DMEM或低糖DMEM均可)或Opti-MEM® Medium,
      然后于其中一管加入2.5 μg质粒DNA,并用枪轻轻吹打混匀;另一管加入 5μl Lipo6000™转染
      试剂,用枪轻轻吹打混匀,请特别注意不可Vortex或离心。室温静置5分钟后(通常最长不宜超
      过25分钟),将含有DNA的培养液用枪轻轻加入含Lipo6000™转染试剂的培养液中,轻轻颠倒
      离心管或者用枪轻轻吹打混匀,室温静置20分钟(室温存放6小时内稳定)。

 

96-well

48-well

24-well

12-well

6-well

6cm dish

10cm dish

Lipo6000™转染试剂

0.2μl

0.5μl

1μl

2μl

5μl

10μl

30μl

无血清培养液或Opti-MEM® Medium

5μl

12.5μl

25μl

50μl

125μl

250μl

750μl

DNA

100ng

250ng

500ng

1μg

2.5μg

5μg

15μg

无血清培养液或Opti-MEM® Medium

5μl

12.5μl

25μl

50μl

125μl

250μl

750μl

稀释好的Lipo6000™转染试剂和DNA分别室温静止放置5分钟,随后两者混合并混匀再室温静止放置20分钟

每孔加入的混合物的量

10μl

25μl

50μl

100μl

250μl

500μl

1500μl

按照上述用量每孔均匀滴加Lipo6000™转染试剂和DNA的混合物,4-6小时后更换培养液或直接继续培养

   注1:对于六孔板中一个孔的细胞,Lipo6000™转染试剂的用量可以在3-12.5μl范围内进行适当调
   节,DNA用量建议固定在2.5μg,但也可以在1-4μg的范围内进行适当调节。通常质粒用量(μg)和
   Lipo6000™(μl)的用量比例为1:2或1:3比较常用,如有必要可以在1:0.5-1:5的范围内优化转染效
   果,上表推荐的比例为1:2,此时Lipo6000™的用量相对较少,既经济又高效。最佳的转染条件,
   不同的细胞类型和培养条件有所不同,可以在上述推荐范围内自行优化转染条件。
   注2:质粒的浓度宜控制在0.5-5μg/μl范围内。
   注3:对于多个孔转染相同数量相同质粒的情况可以把每个孔所需的Lipo6000™转染试剂和DNA混
   合物分别配制,然后一起混合在同一个离心管内,后续混匀并孵育20分钟后,可以按照推荐用量滴
   加到细胞培养器皿内。
   注4:对于其它培养板或培养器皿,各种试剂的用量可以按照细胞培养器皿的培养面积按比例进行换
   算。如果转染寡核苷酸或RNA等可以参考转染DNA的条件进行。
   d. 无论是贴壁细胞还是悬浮细胞,按照六孔板每孔250μl Lipo6000™转染试剂-DNA混合物的用
      量,均匀滴加到整个孔内,随后轻轻混匀。
   e. 为达到最高的转染效率,细胞在转染后培养4-6小时后宜更换为新鲜的完全培养液(对于Hela细
      胞,推荐在转染4小时后更换培养液,对于NIH3T3、CHO、HEK293T和HEK293FT细胞,推荐在
      转染6小时后更换培养液)。
   f. 继续培养约24-48小时后,即可用适当方式检测转染效果,例如荧光检测、Western、ELISA、报
      告基因等,或加入适当的筛选药物如G418等进行稳定细胞株的筛选。
2. siRNA转染:
   a. 细胞培养(以六孔板为例,其它培养板或培养皿可参考六孔板):在转染前一天(18-24小时)按照
      每孔约20-70万细胞(具体的细胞数量据细胞类型、大小和细胞生长速度等而定)接种到六孔板内
      进行培养,使第二天细胞密度能达到约30-50%。
   b. 在进行下述转染步骤前,把培养有细胞的六孔板每孔换成2ml新鲜培养液(含有血清,不含抗生
      素)。可以使用含有血清并含有抗生素的新鲜培养液,但抗生素的存在对于有些细胞容易导致转
      染后出现一定的细胞毒性。
   c. 参考下表,对于待转染的六孔板中每一个孔的细胞,取两个洁净无菌离心管,分别加入125μl
      含抗生素和血清的DMEM培养液(高糖DMEM或低糖DMEM均可)或Opti-MEM® Medium,然后
      于其中一管加入100pmol siRNA,并用枪轻轻吹打混匀;而另一管加入5μl Lipo6000™转染试剂,
      用枪轻轻吹打混匀,请特别注意不可Vortex或离心。室温静置5分钟后(通常最长不宜超过25分钟),
      将含有siRNA的培养液用枪轻轻加入含Lipo6000™转染试剂的培养液中,轻轻颠倒离心管或者用枪
      轻轻吹打混匀,室温静置20分钟(室温存放6小时内稳定)。

 

96-well

48-well

24-well

12-well

6-well

6cm dish

10cm dish

Lipo6000™转染试剂

0.2μl

0.5μl

1μl

2μl

5μl

10μl

30μl

无血清培养液或Opti-MEM® Medium

5μl

12.5μl

25μl

50μl

125μl

250μl

750μl

siRNA

4pmol

10pmol

20pmol

40pmol

100pmol

200pmol

600pmol

无血清培养液或Opti-MEM® Medium

5μl

12.5μl

25μl

50μl

125μl

250μl

750μl

稀释好的Lipo6000™转染试剂和DNA分别室温静止放置5分钟,随后两者混合并混匀再室温静止放置20分钟

每孔加入的混合物的量

10μl

25μl

50μl

100μl

250μl

500μl

1500μl

按照上述用量每孔均匀滴加Lipo6000™转染试剂和DNA的混合物,4-6小时后更换培养液或直接继续培养

   注1:对于六孔板中一个孔的细胞,Lipo6000™转染试剂的用量可以在2.5-7.5μl范围内进行适当调
   节,siRNA用量可以在50-250pmol的范围内进行适当调节。通常siRNA用量(pmol)和Lipo6000™(μl)
   的用量比例为20:1,如有必要可以在10:1-40:1的范围内优化转染效果,上表推荐的比例为20:1,
   此时Lipo6000™的用量相对较少,既经济又高效。最佳的转染条件,不同的细胞类型和培养条件有
   所不同,可以在上述推荐范围内自行优化转染条件。
   注2:siRNA的推荐浓度为20μM,常用的浓度范围为10-50μM
   注3:对于多个孔转染相同数量相同质粒的情况可以把每个孔所需的Lipo6000™转染试剂和siRNA
   混合物分别配制,然后一起混合在同一个离心管内,后续混匀并孵育20分钟后,可以按照推荐用量
   滴加到细胞培养器皿内。
   注4:对于其它培养板或培养器皿,各种试剂的用量可以按照细胞培养器皿的培养面积按比例进行
   换算。如果转染寡核苷酸或RNA等可以参考转染DNA的条件进行。
   d. 无论是贴壁细胞还是悬浮细胞,按照六孔板每孔250μl Lipo6000™转染试剂-siRNA混合物的用
      量,均匀滴加到整个孔内,随后轻轻混匀。
   e. 为达到最高的转染效率,细胞在转染后培养4-6小时后宜更换为新鲜的完全培养液(对于Hela细
      胞,推荐在转染4小时后更换培养液,对于NIH3T3、CHO、HEK293T和HEK293FT细胞,推荐在转
      染6小时后更换培养液)。
   f. 继续培养3-5天后,即可用适当方式检测siRNA对于靶基因的下调效果,例如qPCR、Western、
      ELISA、报告基因等,或加入适当的筛选药物如G418等进行稳定细胞株的筛选。
常见问题:
1. 转染效率低:
   a. 优化质粒与Lipo6000™转染试剂比例,对于难转染的细胞,可适当加大质粒用量。
   b. 应用高纯度、无菌、无污染物的质粒进行转染,DNA纯度方面A260/A280比值要接近1.8,通常宜
      控制在1.8-1.9范围内,偏低则有可能有蛋白污染,偏高则有可能有RNA污染。可以使用碧云天
      生产的质粒大量抽提试剂盒(D0026)进行抽提,以保证可以获得较高的转染效率。
   c. 贴壁细胞转染时状态良好,细胞密度达70-90%时才可进行转染,过稀或过密都可能影响转染效
      率,不同细胞的最佳转染密度需要自行摸索。悬浮细胞宜在对数生长期进行转染。
   d. 需使用无抗生素和无血清培养液配制Lipo6000™转染试剂和质粒或siRNA等的混合物。
   e. 转染后培养时间不足,而被误以为转染效率偏低。不同细胞转染后至显著表达所需要培养的时
      间通常为24-48小时。
   f. 检查细胞是否有支原体感染,支原体感染会影响细胞增殖,并很可能影响转染效率。
   g. 如果没有检测到目的蛋白表达,应该仔细核对转染质粒的测序结果,确保测序结果和读码框完
      全正确。
   h. 如果靶基因的敲减(knockdown)效果欠佳,应该考虑尝试设计不同的siRNA。
2. 细胞毒性较大:
   a. 缩短转染时间,在转染后较短时间内更换新鲜的细胞培养液。
   b. 减少质粒用量,按照比例减少Lipo6000™转染试剂。
   c. 检查是否转染时细胞密度太低。
附录:
常用多孔板和培养皿的尺寸、培养面积、细胞培养量和推荐的培养体积等相关数据表:

Multiple Well Plates or Dishes
Single Well Only for Plates
Diameter(Bottom, mm)* Growth
Area
(cm2)*
Average Cell Yield Total
Well
Volume
(ml)
Working Volume (ml) Recommended Volume
(ml)
6 well 34.8 9.5 9.5×105 16.8 1.9-2.9 2
12 well 22.1 3.8 3.8×105 6.9 0.76-1.14 1
24 well 15.6 1.9 1.9×105 3.4 0.38-0.57 0.5
48 well 11.0 0.95 9.5×104 1.6 0.19-0.285 0.25
96 well 6.4 0.32 3.2×104 0.36 0.10-0.20 0.1
384 well 2.7 0.056 5.6×103 0.112 0.025-0.050 0.030
1536 well 1.63×1.63** 0.025 2.5×103 0.0125 0.005-0.010 0.010
3.5 cm dish 34 9 9.0×105 NA 1.8-2.7 2
6 cm dish 52 21 2.1×106 NA 4.2-6.3 5
10 cm dish 8.4 55 5.5×106 NA 11-16.5 12
15cm dish 14 152 1.5×107 NA 30.4-45.6 35
24.5cm dish 22.4×22.4** 500 5.0×107 NA 100-150 120
    *Diameter and growth area may vary depending on the manufacturer, and the listed
     sizesare from Corning.
    **These wells or dishes are square.
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产品编号 产品名称 产品包装
C0508 磷酸钙法细胞转染试剂盒 >200次
C0526 Lipo6000™转染试剂 0.5ml
C0528 Lipo6000™转染试剂 1.5ml
C0529 Lipo6000™转染试剂 5×1.5ml


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