使用说明：
1. 准备工作：
   A. 取出TdT Buffer(5X)、Biotin-11-dUTP和Ultrapure water溶解，并置于冰浴上备用。
   B. 取出待标记的DNA 探针，用水稀释至1μM，并置于冰浴上备用。
2. DNA探针的标记：
   A. 如下设置反应体系：

   B. 用枪轻轻吹打混匀，切勿vortex。37℃孵育30分钟。
   C. 加入2.5μl探针标记终止液，轻轻混匀终止反应。
3. TdT的去除：
   A. 探针标记反应终止后，加入52.5μl氯仿-异戊醇(24:1)，vortex使有机相和水相充分混合以抽提
      TdT(说明：静止后有机相和水相会很快分层)。
   B. 12000-14000g离心1-2分钟。吸取上清备用。上清即为被生物素标记的DNA探针。
4. 探针的纯化(选做)：
   通常为实验简便起见，可以不必纯化标记好的探针。有些时候，纯化后的探针会改善后续实验的结
   果。如需纯化，可以按照如下步骤操作：
   A. 对于100μl标记好的探针，加入1/4体积即25μl的5M醋酸铵，再加入2体积即200μl的无水乙醇，混
      匀。
   B. -70℃至-80℃沉淀1小时，或-20℃沉淀过夜。
   C. 4℃，12,000g-16,000g离心30分钟。小心去除上清，切不可触及沉淀。
   D. 4℃，12,000g-16,000g离心1分钟。小心吸去残余液体。微晾干沉淀，但不宜过分干燥。
   E. 加入50μl TE，完全溶解沉淀。标记好的探针可以-20℃保存。
5. 生物素标记探针标记效率的检测：
   A. 取5μl Biotin-Control Oligo(0.4μM)，加入196μl TE，混匀，稀释成10nM Biotin-Control
      Oligo(作为标准品)。取出适量10nM Biotin-Control Oligo，依次稀释成5nM、2.5nM、1nM、
      0.5nM和0.25nM。
   B. 取3μl步骤3B所获得的生物素标记的DNA探针(100nM)，加入27μl TE，混匀，稀释成10nM生物素标
      记的探针(作为待测样品)。取出适量的10nM生物素标记的探针，依次稀释成5nM、2.5nM、
      1nM、0.5nM和0.25nM。
   C. 参考下面的表格，取一适当大小的带正电荷尼龙膜，在膜上做好相应标 记。对于经过梯度稀释的
      标准品和待测样品，分别取2μl滴加到膜上。在膜上滴加标准品或待测样品时，请注意使液滴充分
      被膜吸收，在膜上形成一个湿的圆形小斑点。说明：如果条件许可，可 以使用专门用于点杂交或
      狭缝杂交的设备进行探针标记效率的检测，探针用量也参考下表，浓度 可以稀释50倍，而所用体
      积可以相应放大50倍至100μl。

   D. 滴加完所有的标准品和样品后，将膜室温晾干。
   E. 用紫外交联仪(UV-light cross-linker)选择254nm紫外波长，120mJ/cm2，交联30-45秒。如果没
      有紫外交联仪可以使用普通的手提式紫外灯(例如碧云天的手提紫外检测仪，产品编号EUV002)，
      距离膜5-10厘米左右照射1-5分钟。也可以使用超净工作台内的紫外灯，距离膜5-10厘米左右照射
      1-10分钟。最佳的交联时间可以使用标准品自行摸索。
   F. 随后可以立即采用各种生物素检测试剂盒，检测出样品的生物素标记效率；也可以室温存放数天
      直至进行后续检测。
   G. 如果最后采用的是ECL类试剂或其它类似试剂进行检测，则可以对比样品和标准品的灰度，从而计
      算出探针的标记效率。例如2fmol量的待测样品探针的灰度和1fmol标准品的灰度相同，则说明探
      针的标记效率大致为50%，待测样品中总探针的浓度约为1μM，而实际被生物素标记的探针约为
      0.5μM。探针的标记效率也可以通过建立标准曲线进行比较精确的计算。用于后续检测时通常要
      求标记效率不低于30%。有文献报道标记效率和3'末端的碱基无关，但和整个待标记探针的序
      列有关。由于在TdT的催化下可以在待标记探针的3'端加上多个Biotin标记的dUTP，因此有时会
      出现标记效率大于100%的情况。

使用本产品的文献：
1. Lu J, Zhao J, Liu K, Zhao J, Yang H, Huang Y, Qin Z, Bai R, Li P, Ma J, Yan W, Zhao M,
   Dong Z.
   MAPK/ERK1/2 signaling mediates endothelial-like differentiation of immature DCs in
   themicroenvironment of esophageal squamous cell carcinoma.
   Cell Mol Life Sci. 2010 Jun;67(12):2091-106.
2. Zhang P, Li ST, Liu TT, Fu CH, Zhou PP, Zhao CF, Yu LJ.
   Overexpression of a 10-deacetylbaccatin III-10 β-O-acetyltransferase gene leads to
   increased taxol yield in cells of Taxus chinensis.
   PLANT CELL, TISSUE AND ORGAN CULTURE，2011，106（1），63-70.
3. Zhang P, Liu TT, Zhou PP, Li ST, Yu LJ.
   Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of a taxol-producing endophytic
   fungus,Cladosporium cladosporioides MD2.
   Curr Microbiol. 2011 Apr;62(4):1315-20.
4. Li ST, Fu CH, Zhang M, Zhang Y, Xie S, Yu LJ.
   Enhancing Taxol Biosynthesis by Overexpressing a 9-Cis-Epoxycarotenoid Dioxygenase Gene in
   Transgenic Cell Lines of Taxus chinensis.
   PLANT MOLECULAR BIOLOGY REPORTER，October 2012, Volume 30, Issue 5, pp 1125-1130.
5. Li S, Zhang P, Zhang M, Fu C, Yu L.
   Functional analysis of a WRKY transcription factor involved in transcriptional activation
   of theDBAT gene in Taxus chinensis.
   Plant Biol (Stuttg). 2012 Jun 12.
6. Li F, Jiang Z, Wang K, Guo J, Hu G, Sun L, Wang T, Tang X, He L, Yao J, Wen D, Qin X,
   Zhang L.
   Transactivation of the human NME5 gene by Sp1 in pancreatic cancer cells.
   Gene. 2012 Jul 25;503(2):200-7.
7. Xu A, Zhao Z, Chen W, Zhang H, Liao Q, Chen J, Carr JP, Du Z.
   Self-interaction of the cucumber mosaic virus 2b protein plays a vital role in the
   suppression of RNA silencing and the induction of viral symptoms.
   Mol Plant Pathol. 2013 Jun 19. doi: 10.1111/mpp.12051. [Epub ahead of print].