使用说明：
    对于用镍柱纯化大肠杆菌中His标签蛋白比较熟悉的使用者可以直接参考“4. 简化的操作流程”。否则请参考如下详细内容：
    如下以最常见的大肠杆菌中表达纯化His标签重组蛋白为例，说明本产品的使用方法。在其它体系中表达时，请参考该表达体系的相关使用说明，并借鉴大肠杆菌中纯化His标签重组蛋白的使用说明。
1. 大肠杆菌中可溶性His标签重组蛋白的诱导表达
   如下以最常用的IPTG诱导表达系统给予说明，诱导表达条件的优化请参照所使用的诱导表达体系的详
   细说明。其它诱导表达系统请参考适当的使用说明进行。
   a. 挑取表达His标签重组蛋白的单克隆，接种到3ml或10-20ml含适当抗生素的LB培养液中，培养过
      夜。
   b. 按照1:20的比例取培养过夜的菌液，接种到预热至37℃并含适当抗生素的LB培养液中。例如取5ml
      培养过夜的菌液接种到100ml预热至37℃并含适当抗生素的LB培养液中。具体的培养体积视需要纯
      化的蛋白量而定，初步的鉴定培养3-10ml即可；常规的表达纯化，通常可考虑培养100-200ml；制
      备型的纯化，培养体积可以达到1L或更大。如果希望取得更好的表达效果，建议按照1:100的比例
      接种过夜培养的菌液，但后续培养至相应的OD值需要更长的时间。
   c. 37℃常规培养约30-60min或更长时间，至菌液的OD600达到0.5-0.7，并且OD600最好接近0.6。
   d. 加入IPTG至终浓度为1mM，继续培养4-5小时。
      注：可以在加入IPTG前取出少量菌液同样培养4-5小时后作为未诱导的对照，也可以在加入IPTG前
      直接取出少量菌液作为未诱导的对照。对于特定蛋白的诱导表达，最佳的IPTG浓度、诱导温度、
      和诱导时间需要通过实验确定。
   e. 收集菌液至离心管中，4℃ 4,000g离心20min或4℃ 15,000g离心1min，弃上清，收集沉淀。随后
      即可进入细菌裂解步骤，也可以在-20℃或-80℃冻存备用。冷冻保存的菌体使用前需置于冰上解
      冻15min。
2. 非变性条件下His标签蛋白的小量纯化：
   本方法常用于小量样品的快速分析和鉴定，为后续大量制备打下基础。
   a. 接步骤1(e)，离心收集1ml菌液的细菌沉淀并弃上清，加入100μl非变性裂解液，将细菌沉淀充分
      重悬于裂解液中，可进行轻微的vortex(尽量避免产生气泡)。
      注：根据His标签重组蛋白表达的丰度，菌液和裂解液的体积比可以在25:1-5:1范围内适当调
      整。表达丰度非常高时，每毫升菌液沉淀可以加入200μl裂解液；表达丰度非常低时，每毫升菌
      液沉淀可以加入40μl裂解液。相关溶液的配制方法附后。本非变性裂解液可以确保裂解绝大多数
      可溶性蛋白和包涵体蛋白，裂解后可以直接用于SDS-PAGE。如有必要，可以在裂解细菌之前，在
      裂解液中添加适量的蛋白酶抑制剂混合物。
   b. 加入溶菌酶至1mg/ml并轻轻混匀，尽量避免产生气泡，冰水浴或冰上放置30min。
      注：溶菌酶可以用裂解液配制成100mg/ml的母液，临使用前加入。溶菌酶配制成母液后，可以适
      当分装后-20℃保存。
   c. 轻轻vortex数下，以充分裂解细菌，尽量避免产生气泡。
   d. 4℃离心(15000g×10min)，取10μl上清留样作后续检测用，收集余下上清至一新的洁净离心管
      中。
   e. 加入20μl混合均匀的50% BeyoGold™ His-tag Purification Resin，4℃在摇床上缓慢摇动
      30min，以充分结合带His标签的目的蛋白。
      注：缓慢摇动30min已经可以确保蛋白充分结合，但可以根据时间安排的需要缓慢摇动更长时间
      甚至缓慢摇动过夜。经测试，直接使用50% BeyoGold™ His-tag Purification Resin也能获得良
      好的纯化效果。但如果希望获得更高的标签蛋白得率，可以参考步骤3f，用一个柱体积的非变性
      裂解液平衡BeyoGold™ His-tag Purification Resin 2-3次。平衡后，视不同的待纯化蛋白而
      定，待纯化蛋白的得率有可能会提高约5-20%左右。
   f. 4℃离心(1000g×10s)沉淀凝胶，取20μl上清留样作后续检测用，其余上清弃去。
   g. 加入40μl非变性洗涤液重悬凝胶，4℃离心(1000g×10s)，取20μl上清留样作后续检测用，其余上
      清弃去。
   h. 重复步骤g，再进行一次洗涤。
   i. 加入20μl非变性洗脱液，轻轻重悬凝胶。4℃离心(1000g×10s)，收集上清及凝胶。上清即为纯化
      获得的带有His标签的目的蛋白。
   j. 重复步骤i两次。共洗脱收集约60μl纯化的蛋白样品。
3. 非变性条件下His标签蛋白的大量纯化：
   a. 接步骤1(e)，对于新鲜的或解冻的细菌沉淀，按照每克细菌沉淀湿重加入4ml(2-5ml均可)非变性
      裂解液的比例加入裂解液，充分重悬菌体。如有必要，可以在裂解细菌之前，在裂解液中添加适
      量的蛋白酶抑制剂混合物。
   b. 加入溶菌酶至终浓度为1mg/ml并混匀，冰水浴或冰上放置30min。
      注：溶菌酶可以用裂解液配制成100mg/ml的母液，临使用前加入。溶菌酶配制成母液后，可以适
      当分装后-20℃保存。
   c. 冰上超声裂解细菌。超声功率200-300W，每次超声处理10s，每次间隔10s，共超声处理6次。
      注：具体超声处理的方式须根据特定型号的超声仪器自行摸索和优化。
   d. (可选做)如果超声处理后裂解液非常粘稠，可以加入RNase A至10μg/ml及DNase I至5μg/ml，冰上
      放置10-15min。或者也可以使用适当的装好了较细针头的注射器，反复抽吸数次，以剪切粘稠的
      基因组DNA等。
   e. 4℃ 10,000g离心20-30min，收集细菌裂解液上清并置于冰水浴或冰上。可以取20μl上清留作后续
      检测用。
      注：上清必须保持澄清，即不含任何不溶物，才能进行下一步的纯化。上清中如果混有不溶性杂
      质会严重影响后续纯化获得蛋白的纯度。
   f. 取1ml混合均匀的50% BeyoGold™ His-tag Purification Resin，4℃离心(1000g×10s)弃去储
      存液，向凝胶中加入0.5ml非变性裂解液混匀以平衡凝胶，4℃离心(1000g×10s)弃去液体，再重
      复重复平衡1-2次，弃去液体。将约4ml细菌裂解液上清加入其中，4℃在侧摆摇床或水平摇床上缓
      慢摇动60min。
      注：BeyoGold™ His-tag Purification Resin也可以不平衡直接使用，但蛋白的得率有可能会
      有5-20%的下降。
   g. 将裂解液和BeyoGold™ His-tag Purification Resin的混合物装入试剂盒提供的亲和层析柱空柱
      管。
      注：也可先取1ml混合均匀的50% BeyoGold™ His-tag Purification Resin装柱，然后用0.5ml
      非变性裂解液平衡2-3次后加入约4ml细菌裂解液上清，后续可以把穿流液收集后重复上柱3-5次以
      充分结合目的蛋白。先混合后装柱的方式操作起来相对麻烦一些，但更有利于带有His标签重组蛋
      白与镍柱的充分结合，特别是当His标签被蛋白本身部分遮挡或His标签重组蛋白浓度很低时与镍
      柱的结合效率会高一些。
   h. 将纯化柱底部的盖子打开，在重力作用下使柱内液体流出，收集约20微升穿流液作后续分析用。
   i. 洗柱5次，每次加入0.5-1ml非变性洗涤液，每次均收集约20微升穿柱的洗涤液用于后续的分析检
      测用。洗柱及下一步洗脱过程中可以用Bradford法(P0006)简单快速地检测每次洗涤液和洗脱液中
      的蛋白含量，从而考虑增加或减少洗涤和洗脱的次数。
      注：如果出现后续获得蛋白纯度不够高的情况，可以再增加洗柱次数2-3次。
   j. 洗脱目的蛋白6-10次，每次用0.5ml非变性洗脱液洗脱。将每次的洗脱液分别收集到不同的离
      心管中。收集获得的洗脱液即为纯化的His标签蛋白样品。蛋白纯化效果可以参考图1。
              
     图1. His标签重组蛋白纯化效果图。M: marker; CL：细菌裂解液(cell lysate)；FT：上样穿流液(flow through)；W1-W3：洗涤液1-3 (wash 1-3)；E1-E4：洗脱液1-4 (elution 1-4)。注：实际的电泳结果会因样品、上样量等的不同而有所不同。
4. 简化的操作流程：
   a. 细菌中的目的蛋白诱导表达后，离心沉淀细菌。
   b. 每克细菌沉淀湿重加入4ml非变性裂解液，可添加适量蛋白酶抑制剂，充分重悬细菌。
   c. 加入溶菌酶至终浓度为1mg/ml并混匀，冰水浴或冰上放置30min。
      注：溶菌酶可以用裂解液配制成100mg/ml的母液，临使用前加入。溶菌酶配制成母液后，可以适
      当分装后-20℃保存。
   d. 冰上超声裂解细菌，离心取上清。
   e. BeyoGold™ His-tag Purification Resin装柱，1ml非变性裂解液平衡纯化柱2次。
   f. 步骤4d中的上清上柱。
      注：上清上柱是可以收集穿流液并重复上柱3-5次，以充分结合His标签蛋白。
   g. 用0.5ml非变性洗涤液洗柱5次。
      注：如果出现咪唑浓度偏低的情况，可以自行添加适量咪唑，如果出现咪唑浓度偏高的情况，可
      以使用试剂盒提供的非变性裂解液作为洗涤液使用。
   h. 用0.5ml非变性洗脱液洗脱6-10次。
      注：通常该洗脱条件会比较理想。如果出现洗脱效果欠佳的情况，可以自行提高咪唑浓度至
      100-250mM。

常见问题：
如果纯化不成功，可以对纯化过程中收集的每个组分进行SDS-PAGE电泳检测，分析其原因。
   蛋白无法与BeyoGold™ His-tag Purification Resin结合
   1. 测序检查基因序列的读码框是否正确。
   2. 尝试将标签加在蛋白的另一端。
   3. 增加BeyoGold™ His-tag Purification Resin与蛋白结合时间(如4℃过夜)。
   4. 如果使用预装柱，可收集裂解液上柱后的穿流液并多次重复上柱。
   5. 检查所有缓冲液和溶液的pH值是否正确。
   6. 确认体系中所用各种试剂的浓度在镍柱的耐受范围以内。
   7. 降低结合缓冲液中的咪唑浓度。
   目的蛋白被洗涤液洗脱
   1. 降低洗涤液中的咪唑浓度或者稍微提高其pH值。
   2. 检查洗涤液的pH和成分。
   3. 确认洗涤液中各种试剂的浓度在耐受范围内。
   蛋白在纯化过程中形成沉淀
   1. 将纯化温度控制在室温。
   2. 加入去垢剂，如0.1% Triton X-100或者Tween-20。
   蛋白无法洗脱
   1. 用梯度pH及咪唑洗脱，确定最优洗脱条件。
   目的蛋白与其它蛋白共同洗脱
   1. 提高结合缓冲液和洗涤液中的咪唑浓度。
   2. 降低BeyoGold™ His-tag Purification Resin的使用量。
   3. 加入DTT或β-巯基乙醇打开二硫键。
   4. 增加盐或者去垢剂浓度，或者向洗涤液中加入乙醇或甘油以降低非特异相互作用。
   5. 检查基因内部是否含有起始密码子(C端标记蛋白)或者提前终止位点(N端标记蛋白)。

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