使用说明：
1.试剂盒的准备。
a.参考下表，按照每个样品使用100-500μl裂解液的比例，准备相关试剂。

Steps	Solution required	Volume per assay	Volume per assay
Cell lysis and sample preparation	Lysis Buffer with Protease Inhibitor Cocktail	100μl	500μl
Preparation of V5 Peptide elution buffer and magnetic beads	TBS	~0.52ml	~1.6ml
Immunoprecipitation	Magnetic Beads	4μl	20μl
Wash (3 times)	Lysis Buffer with Protease Inhibitor Cocktail	100μl each time	500μl each time
Peptide competitive elution (optional)	Peptide solution (1X)	20μl	100μl
Acid elution and neutralization (optional)	Acid Elution Buffer	20μl	100μl
	Neutralization Buffer	2μl	10μl
SDS-PAGE sample loading buffer elution (optional)	SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)	20μl	100μl

b.含抑制剂裂解液的配制。参考上表，按照每50-100万细胞使用100-200μl含抑制剂裂解液用于裂解以及300-600μl含抑制剂裂解液用于洗涤的比例，配制适量的含抑制剂裂解液。将Lysis Buffer与Protease Inhibitor Cocktail (100X)按照100:1的比例混合，例如在1ml的Lysis Buffer中加入10μl Protease Inhibitor Cocktail (100X)，即得1ml含抑制剂裂解液(Lysis Buffer with Protease Inhibitor Cocktail)。配制好的含抑制剂裂解液宜放置在冰浴或4℃。
注1：如果免疫沉淀的目的蛋白涉及磷酸化修饰或者乙酰化修饰，需要添加磷酸酶抑制剂或去乙酰化酶抑制剂。推荐使用碧云天的磷酸酶抑制剂混合物A (50X) (P1081/P1082)和去乙酰化酶抑制剂混合物(100X) (P1112/P1113)。如果有特殊需求，可考虑选择其它适当的抑制剂混合物：https://www.beyotime.com/support/lysis-inhibitor cocktail.htm。
注2：本试剂盒提供的Lysis Buffer不仅用于样品裂解，也用于后续的洗涤步骤，请特别注意“注意事项”中的相关描述。
注3：含抑制剂裂解液宜现用现配，不宜配制后冻存并留作后续使用。如果有特殊需求，可以尝试碧云天的其它多种蛋白酶、磷酸酶和去乙酰化酶抑制剂混合物：https://www.beyotime.com/support/lysis-inhibitor cocktail.htm。
c.TBS的配制。将TBS (10X)用超纯水水稀释至1X，即为TBS。例如1ml TBS (10X)加入9ml超纯水，混匀后即为TBS。
d.磁珠的准备。由于磁珠储存在特殊保护液中，所以需要在加入样品前适当洗涤。
(a)用移液器轻轻吹打重悬磁珠，按照每500μl样品使用20μl磁珠悬浊液比例，取适量磁珠至一洁净离心管中(FTUB015)，加入TBS至最终体积为约0.5ml。说明：如果初始磁珠体积大于0.2ml，可以考虑先直接置于磁力架上分离10秒，去除上清，然后再加入TBS至最终体积为约0.5ml。
(b)用移液器轻轻吹打重悬磁珠。置于磁力架上分离10秒，去除上清。重复上述步骤两次。
(c)按照初始体积的量，用TBS重悬磁珠。
e.V5多肽洗脱液的配制。将V5 Peptide (25X)用TBS稀释25倍即为3X V5多肽洗脱液，如将10μl V5 Peptide (25X)加入240μl TBS中混匀即可。配制好的V5多肽洗脱液宜放置在冰浴或4℃。本V5 Peptide (25X)经过优化，适用于大多数洗脱，如果标签蛋白丰度高，也可以仅稀释10倍。如需更多的V5多肽，可订购碧云天的V5 Peptide (V5多肽) (P9813)。
f.SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)的配制。取适量SDS-PAGE Sample Loading Buffer (5X)用水稀释5倍即为SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)。例如0.2ml SDS-PAGE Sample Loading Buffer (5X)加入0.8ml超纯水，混匀后即为SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)。
2.细胞或组织样品的裂解和准备。样品裂解后宜立即进行后续的免疫沉淀或免疫共沉淀，如果不能立即进行后续的实验，可以-20℃或-80℃冻存，但冻融可能会影响蛋白与蛋白的相互作用。所有的样品裂解步骤宜在冰浴或4℃操作，以尽量减少蛋白降解的可能性。样品准备好后，注意取一定量作为Input或Total，以用于后续的Western等检测。
a.悬浮细胞的样品裂解和准备。250-1000×g室温离心3-5min收集细胞。如有必要，可以使用PBS洗涤一次，然后吸净残留的液体。轻轻vortex或者弹击管底以把细胞尽量分散开。按照每50-100万细胞加入100-200μl的比例加入含抑制剂裂解液。轻弹管底或适当吹打，以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多，建议分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。大团的细胞较难裂解充分，而少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。充分裂解后，10,000-14,000×g在4℃离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。
b.贴壁细胞样品的裂解和准备。吸除培养液。如有必要，用PBS洗涤一次，然后吸净残留的液体。按照每50-100万细胞(相当于6孔板的一个孔)加入100-200μl的含抑制剂裂解液，适当吹打，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触动物细胞1-2秒后，细胞就会被裂解。植物细胞宜在冰上裂解2-10min。充分裂解后，10,000-14,000×g在4℃离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。
c.细菌或酵母样品的裂解和准备。对于1ml菌液或酵母液，离心去上清，如果有必要，可以使用PBS洗涤一次，然后吸净残留的液体。轻轻vortex或者弹击管底以把细菌或酵母尽量分散开。加入100-200μl含抑制剂裂解液，轻轻vortex或者弹击管底以混匀，冰上裂解2-10min。如果希望获得更好的裂解效果，细菌和酵母可以分别使用溶菌酶(lysozyme)和破壁酶(lyticase)消化，然后再使用含抑制剂裂解液进行裂解。充分裂解后，10,000-14,000×g在4℃离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。注：裂解后很可能会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。
d.组织样品的裂解和准备。
(a)把组织剪切成细小的碎片。如果组织样品本身非常细小，也可以不再进行剪切。
(b)按照每10-20毫克组织使用100-200μl的比例加入含抑制剂裂解液。如果裂解不充分可以使用更多的含抑制剂裂解液，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。
(c)用玻璃匀浆器匀浆，或使用碧云天生产的E6600 TissueMaster™手持式组织研磨仪研磨，直至充分裂解。也可以把组织样品冷冻后液氮研磨，研磨充分后加入裂解与洗涤液进行裂解。
(d)充分裂解后，10,000-14,000×g在4℃离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的免疫沉淀和免疫共沉淀等。每20mg冻存的小鼠肝脏组织用200μl含抑制剂裂解液裂解后获得的上清，其蛋白浓度约为15-25mg/ml，不同状态的不同组织有所不同。注：裂解后很可能会出现少量不溶性物质，主要为基因组DNA等，离心后会产生沉淀物。
3.免疫沉淀(Immunoprecipitation, IP)。
a.加入磁珠与孵育。按照每500μl蛋白样品加入20μl磁珠悬浊液的比例加入磁珠，置于侧摆摇床或旋转混合仪上，室温孵育2小时或4℃孵育过夜。
注1：样品中需要加入BeyoMag™ Anti-V5 Magnetic Beads用于免疫沉淀带有V5标签的目的蛋白及其复合物，同时建议酌情在部分样品中加入BeyoMag™ Mouse IgG Magnetic Beads进行免疫沉淀以作为阴性对照。
注2：孵育过程中，如果磁珠发生聚团或呈片状属正常现象，不会影响实验结果。
注3：对于使用BeyoMag™ Anti-V5 Magnetic Beads进行免疫沉淀后续发现背景非常高的情况，可以考虑使用BeyoMag™ Mouse IgG Magnetic Beads进行预沉淀处理，以消除非特异性吸附，然后再使用BeyoMag™ Anti-V5 Magnetic Beads进行免疫沉淀。BeyoMag™ Mouse IgG Magnetic Beads用于进行预免疫沉淀时用量比较多，需要另行订购。
b.磁分离。孵育完毕后，置于磁力架上分离10秒，去除上清。注：可保留部分上清液，用于检测免疫沉淀的效果。
c.洗涤。加入0.5ml的含抑制剂裂解液，用移液器轻轻吹打重悬磁珠。置于磁力架上分离10秒，去除上清。重复使用含抑制剂裂解液洗涤三次。注：也可以通过检测洗涤得到的液体的OD₂₈₀来判断是否洗涤完全，若OD₂₈₀大于0.05，应适当增加洗涤次数。
4.洗脱。根据标签蛋白的特点及后续实验要求，可以选择如下3种方法之一进行洗脱。
a.V5多肽竞争洗脱法。本方法为非变性法，洗脱效率高，且洗脱后的蛋白保持原有的生物活性，便于后续分析检测。
(a)每20μl原始磁珠体积，加入100μl V5多肽洗脱液，混匀后置于侧摆摇床或旋转混合仪上，室温摇晃孵育30-60分钟，或4℃孵育1-2小时。为了提高洗脱效率，可延长孵育时间或重复洗脱。
(b)孵育完毕后，置于磁力架上分离10秒，将上清转移到新的离心管中。上清即为洗脱的V5标签蛋白及其复合物。
(c)洗脱的V5标签蛋白及其复合物置于4℃待用，或者-20℃或-80℃长期保存。
注：由于V5-tag与V5抗体的结合力非常强，V5多肽竞争洗脱的效果可能会不太理想，此时需要对V5多肽浓度及竞争条件进行一定的优化。
b.酸性洗脱法。本方法为非变性法，比较快速高效。洗脱后的蛋白很多情况下能保持原有的生物活性，便于后续分析检测。
(a)每20μl原始磁珠体积，加入100μl Acid Elution Buffer (酸性洗脱液)，混匀后置于侧摆摇床或旋转混合仪上，室温孵育5分钟。注：孵育时间不宜超过15分钟。
(b)孵育完毕后，置于磁力架上分离10秒，将上清转移到新的离心管中，并立刻加入10μl Neutralization Buffer (中和液)，适当混匀。注：须立刻加入中和液并混匀，否则长时间处于酸性洗脱液中会容易导致一些蛋白失去活性。
(c)为了获得最大的洗脱效率，可重复步骤a和b，并将相同样品合并。
(d)洗脱并中和的V5标签蛋白及其复合物置于4℃待用，或者-20℃或-80℃长期保存。
注1：酸性洗脱法虽然高效，但仍可能低于竞争洗脱法或SDS-PAGE上样缓冲液洗脱法。
注2：由于目的蛋白的差异可能对酸性洗脱法的洗脱效率有一定的影响，如果对洗脱效率的要求比较高，可对酸性洗脱液的pH在2.5-3.1之间进行一定的调整，相应的中和液的pH值或量也要进行一定的调整，具体需要自行优化相关实验条件。也可以考虑采用效率预期最高的SDS-PAGE上样缓冲液洗脱法，后者的缺点是在变性条件下进行洗脱，可能会对后续的对于蛋白活性有要求的实验产生影响。
c.SDS-PAGE上样缓冲液洗脱法。本方法为变性法，得到的蛋白样品适合SDS-PAGE电泳或Western检测。
(a)每20μl原始磁珠体积的磁珠，加入100μl SDS-PAGE Sample Loading Buffer (1X)，95℃加热5分钟。
(b)置于磁力架上分离10秒，取上清即可用于SDS-PAGE电泳或Western检测。
注1：通常SDS-PAGE蛋白上样缓冲液含有DTT等还原剂，其洗脱得到的蛋白样品中会含有抗体的轻链和重链。
注2：其它SDS-PAGE上样缓冲液可以考虑选择碧云天的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液(2X) (P0015B)、SDS-PAGE蛋白上样缓冲液(5X) (P0015)、SDS-PAGE蛋白上样缓冲液(6X) (P0015F)。
常见问题：

Problem	Possible Causes	Solution
Very few or no tagged protein exists in the eluate.	Protein is not completely eluted.	Change elution methods.
	No target protein expressed.	Make sure the protein of interest contains the tagged protein by Western blot or dot blot analyses.
	Very low protein expression level.	1.Use larger volume of cell lysate. 2.Optimize expression conditions to raise the protein expression level.
	Washes are too stringent.	Reduce the time and number of washes.
	Incubation times are inadequate.	Increase the incubation time.
	Interfering substance is present in sample.	Lysates containing high concentration of DTT, 2-mercaptoethanol, or other reducing agents may destroy antibody function, and must be avoided.
	Detection system is inadequate.	If Western blot detection is used: 1.Check primary and secondary antibodies using proper controls to confirm binding and reactivity. 2.Verify that the transfer was adequate by using prestained protein marker or staining the membrane with Ponceau S. 3.Use fresh detection substrate or try a different detection system.
Background is too high.	Proteins bind nonspecifically to the monoclonal antibody, insufficient washing on magnetic beads, or the microcentrifuge tubes.	1.Pre-clear lysate with Mouse IgG Magnetic Beads (P2171) to remove nonspecific binding proteins. 2.After suspending beads for the final wash, transfer entire sample to a clean microcentrifuge tube before centrifugation.
	Washes are insufficient.	1.Increase the number of washes. 2.Prolong duration of the washes, incubating each wash for at least 15 minutes. 3.Choose other wash buffers. Increase the salt and/or detergent concentrations in the wash solutions. 4.Centrifuge at lower speed to avoid nonspecific trapping of denatured proteins.
Multiple protein bands found in the eluate.	The protein is not stable at room temperature.	Purify the target protein at lower temperature, such as 4℃.
	Protein degradation due to proteases activity during purification process.	Add protease inhibitors to cell lysate.
	Non‐specific binding.	1.Prepare cell lysate again. 2.Add additional wash steps.

参考文献：
1.Lee C. Methods Mol Biol. 2007. 362:401-406.
2.Gevaert K, Vandekerckhove J. Electrophoresis. 2000. 21:1145-1154.
3.Kolodziej K E, Pourfarzad F, de Boer E, Krpic S, Grosveld F, Strouboulis J. BMC Mol Biol. 2009. 10:6.
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