使用说明：
1.细胞按照实验设计进行适当处理后，制备成单细胞悬液，计数。取适量细胞，4ºC，500×g离心5分钟，弃上清。每个样品推荐的细胞用量为1×106。
2.加入100µl BeyoFC™流式检测细胞染色缓冲液(
C1711)，然后轻轻重悬细胞。
3.根据相应的抗体说明书进行细胞表面抗原的免疫荧光染色。
4.向细胞悬液中加入2µl BeyoFC™ PI染色液(50X)，吹打混匀后室温避光孵育10-15分钟。
注：用于活细胞与死细胞区分染色时，本染色液与细胞内免疫染色步骤不兼容。如果实验涉及到细胞内免疫染色，则需使用可兼容固定步骤的胺反应性染料，并在细胞内免疫染色开始前进行死细胞染色。
5.孵育结束后可直接使用流式细胞仪检测，PI结合DNA后的最大激发光波长为535nm，最大发射光波长为617nm。
注：在检测前，也可将细胞用BeyoFC™流式检测细胞染色缓冲液(
C1711)洗涤2-3次，最后用每个样品加入0.5-1ml BeyoFC™流式检测细胞染色缓冲液重悬细胞后用于检测，这样染色效果更好。
注：相关使用说明仅供参考，具体可根据细胞类型、实际检测效果及流式细胞仪配置等进行一些优化或调整，BeyoFC™ PI染色液(50X)可在0.5X-2X范围内摸索最佳工作浓度。
参考文献：
1.Arndt-Jovin DJ, Jovin TM. Methods Cell Biol. 1989. 30:417-48.
2.Waring MJ. J Mol Biol. 1965. 13(1):269-82.
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| 产品编号 |
产品名称 |
包装 |
| FFC005-1bag |
BeyoGold™流式细胞管(5ml, 透明, 无菌) |
25个/袋 |
| FFC005-20bags |
BeyoGold™流式细胞管(5ml, 透明, 无菌) |
25个/袋, 20袋/箱 |
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200ml |
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大鼠外周血淋巴细胞分离试剂盒 |
200ml |
| C0029S |
小鼠外周血淋巴细胞分离试剂盒 |
200ml |
| C0031S |
兔外周血淋巴细胞分离试剂盒 |
200ml |
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20次/50次/100次 |
| C1065 |
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20次/50次 |
| C1069 |
Annexin V-mCherry细胞凋亡检测试剂盒 |
20次/50次/100次 |
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20次/50次 |
| C1711 |
BeyoFC™流式检测细胞染色缓冲液 |
100ml/500ml |
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100ml/500ml |
| C1715 |
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100ml/500ml |
| C1717 |
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100ml |
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100ml |
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