使用说明：
1.样品的准备：
a.血液样品的准备：对于血清样品，将全血在常温如25ºC下放置30分钟至2小时，不要剧烈摇晃以免溶血，待全血自然凝固并析出血清后，4ºC约1000-2000×g离心10分钟，取黄色上清即得血清，注意不要吸取白色或淡黄色沉淀；对于血浆样品，将全血用肝素或者EDTA进行抗凝，4ºC约1000-2000×g离心10分钟，取黄色或淡黄色上清即得血浆，注意不要吸取白色沉淀。血清和血浆都需置于冰上，如果不能立即检测，也可以分装并短期保存于-20ºC或-80ºC。对于冻存的样品，在检测前解冻后冰浴存放备用，使用前必须混匀。
b.细胞或组织样品的准备：对于培养的贴壁细胞，PBS (C0221A)洗涤一次并吸净残留液体。对于培养的悬浮细胞，先适当离心(如100-500×g, 5分钟)收集细胞到离心管内，弃上清并吸净残留液体。按照每100万细胞加入100-200μl BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay的比例加入裂解液，适当吹打，冰浴5-10分钟以充分裂解细胞。4ºC约12,000×g离心3-5分钟，取上清用于后续检测。对于组织样品，按照每10mg组织加入100μl BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay的比例，使用TissueMaster™高通量组织研磨仪(1.5/2ml×48) (E6618)、TissueMaster™手持式组织研磨仪(E6600)或玻璃匀浆器在约4ºC或冰浴等低温条件下进行匀浆。4ºC约12,000×g离心3-5分钟，取上清用于后续检测。以上所有操作均需在4ºC或冰上操作。制备好的细胞或组织样品如果不能立即检测，可以-20ºC或-80ºC冻存。
c.细胞培养上清样品的准备：对于贴壁细胞，直接取培养液；对于悬浮细胞，离心取培养液。
2.试剂盒的准备：
a.融解BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay、检测缓冲液、显色液和底物，平衡至室温后混匀备用。其它试剂存放于冰浴备用，使用完毕后宜立即按照试剂盒要求的条件保存。
b.显色工作液(Working Solution)的配制：按照每个检测反应80μl的体积配制适量的显色工作液。均匀混合72μl检测缓冲液(Fumarate Assay Buffer)、2μl酶溶液A (Enzyme Solution A)、2μl酶溶液B (Enzyme Solution B)、2μl显色液(Chromogen Solution)、2μl底物(Substrate)，即可配制成80μl显色工作液(Working Solution)。根据待检测样品(包括标准品)的数量，配制适量的显色工作液。具体配制方法参考下表。配制好的显色工作液如果置于4ºC或冰浴避光保存，可以在当天使用，但建议尽量现配现用。

Samples	1	10	20	50
Fumarate Assay Buffer (μl)	72	720	1440	3600
Enzyme Solution A (μl)	2	20	40	100
Enzyme Solution B (μl)	2	20	40	100
Chromogen Solution (μl)	2	20	40	100
Substrate (μl)	2	20	40	100
Working Solution (μl)	80	800	1600	4000

注1：由于酶溶液的用量较少且易沉降，必须注意在使用前先轻轻离心一下，然后适当混匀后再使用。
注2：L-苹果酸和NADH的存在会对延胡索酸的检测产生干扰。如果样品含有L-苹果酸或NADH，需同时设置样品背景对照孔，加入不含酶溶液A的显色工作液，即配制显色工作液时2µl酶溶液A用检测缓冲液替代。计算时样品孔的读数值需要减去样品背景对照孔的读数。
3.样品测定：
a.延胡索酸标准曲线的设置：取25μl延胡索酸标准溶液(10mM)，加入475μl检测裂解液或检测缓冲液(如果检测BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay制备的细胞或组织裂解样品，使用检测BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay制备的；如果是血液、上清等无需裂解处理的样品，使用检测缓冲液)，混匀，即得浓度为500μM的延胡索酸标准溶液。分别取500μM的延胡索酸标准溶液0、2、4、8、12、16、20μl加入96孔板的标准品孔中，并用对应的BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay或检测缓冲液补足到20μl，此时标准曲线的浓度为0、50、100、200、300、400、500μM。
b.取1-20μl样品或稀释后的样品至96孔板样品孔中，并相应地再加入检测裂解液或检测缓冲液至样品孔中，补足到20µl。同时设置仅含检测裂解液或检测缓冲液的孔为空白对照孔。
注：为确保数值在标准曲线范围内，建议进行预实验将样品同时设定多个稀释倍数，以确定样品的大致浓度。如果数值不在标准曲线范围内，可调整样品的稀释倍数或者增加样品的量。如果检测BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay制备的细胞或组织裂解样品，使用BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay稀释；如果检测血液、上清等无需裂解处理的样品，使用检测缓冲液稀释。此处的样品总稀释倍数记为n (例如本步骤中对样品进行了10倍稀释，加入的“稀释后的样品”为10µl，则n=10×20/10=20)。
c.各孔加入显色工作液80μl，混匀，37ºC反应30分钟。
注：如果吸光度偏低，可适当延长反应时间。
d.在450nm测定吸光度。
e.建立标准曲线，并计算样品中延胡索酸的浓度(记录为A)，如果样品背景对照孔吸光度比较高，样品的吸光度需要减去样品背景对照孔的吸光度。延胡索酸标准曲线可以参考图2，在20-500μM浓度范围内有良好的线性关系。延胡索酸浓度C的计算公式如下：
C (μM) = A × n
注1：A为步骤3e根据标准曲线确定的稀释后的样品延胡索酸浓度(μM)；
n为步骤3b样品总稀释倍数。
注2：计算获得的延胡索酸浓度其中包含了延胡索酸和延胡索酸根的摩尔浓度，也可以理解为包含了延胡索酸和延胡索酸盐的摩尔浓度。上述仅为了表述方便，仅描述为延胡索酸。如有必要，可根据延胡索酸的分子量160.07计算出样品中延胡索酸的质量浓度(μg/ml) = C × 0.16007。
参考文献：
1.McFall SM, Abraham B, Narsolis CG, Chakrabarty AM. J Bacteriol. 1997. 179(21):6729-35.
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